Psittacanthus calyculatus es una especie semiparásita que afecta especies leñosas en México. Para evaluar su potencial, se estudiaron extractos del tallo obtenidos mediante método acuoso (EAT) y con una mezcla metanol-acetona-agua (EMT). Se determinaron compuestos bioactivos, la capacidad antioxidante mediante DPPH, ABTS y FRAP, y la actividad antimicrobiana frente a Salmonella Typhi. EMT presentó mayores concentraciones de fenoles (237.42 ± 0.08 mg EAG/g) y flavonoides (67.9 ± 0.09 mg EC/g) que EAT (153.69 ± 0.16 y 20.86 ± 0.03 mg EC/g; p < 0.03). La actividad DPPH y ABTS fue similar en ambos extractos, mientras que FRAP fue superior en EAT (16.6 ± 0.78 mg Trolox/mL) frente a EMT (6.14 ± 0.56 mg Trolox/mL; p < 0.03). Ambos extractos mostraron inhibición antimicrobiana comparable. Estos resultados evidencian su potencial antioxidante y aplicación terapéutica frente a la bacteria patógena.

Palabras clave: antioxidante, antimicrobiano, fitoterapéuticos, extracción.

Psittacanthus calyculatus is a semiparasitic species that affects woody plants in Mexico. To evaluate its potential, stem extracts were obtained using an aqueous method (EAT) and a methanol–acetone–water mixture (EMT). Bioactive compounds were quantified, antioxidant capacity was assessed using DPPH, ABTS, and FRAP assays, and antimicrobial activity was evaluated against Salmonella Typhi. EMT exhibited higher concentrations of total phenolics (237.42 ± 0.08 mg GAE/g) and flavonoids (67.9 ± 0.09 mg CE/g) compared to EAT (153.69 ± 0.16 mg GAE/g and 20.86 ± 0.03 mg CE/g, respectively; p < 0.03). DPPH and ABTS radical scavenging activities were similar for both extracts, whereas FRAP values were significantly higher in EAT (16.6 ± 0.78 mg Trolox/mL) than in EMT (6.14 ± 0.56 mg Trolox/mL; p < 0.03). Both extracts exhibited comparable antimicrobial inhibition. These findings highlight the antioxidant potential of P. calyculatus and support its potential therapeutic application against this pathogenic bacterium.

Keywords: antioxidant, antimicrobial, phytotherapeutics, extraction.

El muérdago mexicano Psittacanthus calyculatus (P. calyculatus) de la familia Loranthaceae, es una especie semiparásita que infecta especies como encino (Quercus deserticola), huizache (Acacia schaffneri) y mezquite (Prosopis laevigata)¹. Su distribución geográfica abarca desde México hasta Venezuela². En el estado de Guanajuato, particularmente en el “Cerro del Palenque” de la ciudad de Purísima del Rincón, esta especie parasita al mezquite, comprometiendo su supervivencia.

Estudios han reportado que P. calyculatus contiene compuestos con potencial bioterapéutico, con actividades antidiabética, antihipertensiva, antioxidante, anticancerígena y antimicrobiana^3-7. En la tradición herbolaria mexicana, esta planta ha sido utilizada para tratar diversas patologías. Sin embargo, los estudios farmacológicos aún son limitados, por lo que su potencial bioterapéutico sigue siendo cuestionable. En los últimos años, la resistencia a antibióticos ha amenazado las terapias contra bacterias patógenas, lo que ha impulsado la búsqueda de compuestos bioactivos naturales de forma segura y sostenible. En este contexto, este trabajo tuvo como finalidad examinar las propiedades bioterapéuticas del tallo de P. calyculatus mediante la evaluación de la capacidad antioxidante (DPPH, ABTS•+, FRAP) y su potencial antimicrobiano.

En el “Cerro del Palenque” de Purísima del Rincón, Guanajuato, el muérdago P. calyculatus parasita al mezquite, afectando su supervivencia y representando un riesgo ecológico local. Estudios sugieren que este muérdago posee compuestos con potencial antidiabético, antihipertensivo y antioxidante; Sin embargo, los análisis farmacológicos aún son limitados. Este estudio busca analizar las propiedades bioterapéuticas del tallo, estableciendo bases para un aprovechamiento sostenible y para el desarrollo de nuevos fármacos.

Material vegetal

La recolección de tallos (T) de P. calyculatus se realizó en el Área Natural Protegida “Cerro del Palenque”, en Purísima del Rincón, Guanajuato, a partir de su hospedero de mezquite (P. laevigata). Se obtuvieron 1000 g del material vegetal, los cuales se lavaron con solución de cloro al 2 %. Posteriormente, se deshidrataron en un horno a 60 °C hasta alcanzar peso constante y se pulverizaron en una licuadora industrial, obteniéndose un polvo fino que fue tamizado con malla No. 60. El polvo obtenido se conservó a -20 °C.

Extracción

Los extractos de muérdago (EM) a partir de T se obtuvieron mediante dos métodos: metanol-acetona-agua (EMAA) y extracción acuosa (EA).

En EMAA⁸, 5 g de muestra se añadieron a una mezcla metanol:agua (50:50, v/v) acidificada con ácido clorhídrico (8 mL L^-1), en una proporción de 50 mL/g de muestra, manteniéndose bajo agitación constante durante 60 minutos a temperatura ambiente. Posteriormente, se centrifugó a 5000 g, durante 15 minutos a 25 °C. El precipitado se lavó con una solución de etanol:agua (70-30, v/v; 50 mL/g de muestra) durante 60 minutos y se centrifugó bajo las mismas condiciones. Los sobrenadantes se unificaron y los disolventes se eliminaron en atmosfera reducida durante 2 horas a 60 °C en un rotavapor acoplado a una bomba de vacío.

En EA⁹ se mezclaron 5 g con 200 mL de agua destilada y se agitaron a temperatura ambiente durante 24 horas. Posteriormente, se centrifugó y filtró. El disolvente se eliminó bajo las condiciones descritas anteriormente. Los EM se conservaron a 4 °C, protegidos de la luz hasta su uso.

Determinación cualitativa

La identificación cualitativa de compuestos bioactivos se realizó mediante reacciones de cambio de color y formación de precipitados, empleando un control negativo sin EM.

Determinación de lactonas sesquiterpénicas

Se añadieron 5 gotas de la solución Baljet a 4 mL de cada EM. La aparición de una coloración naranja a rojo indica la presencia de estos compuestos¹⁰.

Determinación de saponinas

Se combinaron 1 mL de cada EM con 4 mL de agua destilada y se sometió a agitación durante 1 minuto. La formación de una capa espumosa persistente (≥ 2 mm durante 10 minutos) indica la presencia de saponinas¹¹.

Determinación de fenoles

A 1 mL de cada EM se adicionaron 1 mL de etanol y 3 gotas de cloruro de hierro III al 5 %. La coloración rojo-vino indica fenoles totales, mientras que una coloración azulada sugiere pirogaloles¹¹.

Determinación de flavonoides

Se mezcló 1 mL de cada EM con 1 mL de hidróxido de sodio al 40 %, observándose una coloración amarilla intensa. La reacción se considera positiva si, tras la adición de solución ácida, se produce decoloración¹¹.

Determinación de azúcares reductores

Se realizaron las pruebas de Fehling y Benedict. A 1 mL de cada EM se añadió 5 gotas de cada reactivo. En ambas, la aparición de una coloración rojo-ladrillo indica la presencia de azúcares reductores^12.

Determinación de quinonas

Se incorporó 1 mL de cada EM a ácido sulfúrico concentrado. La aparición de coloración roja indica resultado positivo¹⁰.

Determinación de glicósidos cardiotónicos

Prueba de Keller-Kiliani: se añadió a 1 mL de cada EM, 1 mL de ácido acético, 5 gotas de cloruro de hierro III al 5 % y 1 mL de ácido sulfúrico concentrado. La formación de un anillo café con un anillo violeta inferior indica resultado positivo¹¹.

Determinación de antraquinonas

Se mezcló 1 mL de cada EM, 1 ml de benceno y 5 gotas de amoníaco al 10 %. La formación de un sedimento rojo confirma la presencia de antraquinonas¹¹.

Cuantificación de fenoles totales

Se añadieron 25 µL de cada EM en microplacas de 96 cavidades, junto con 80 µL de agua destilada, 5 µL del reactivo Folin Ciocalteu, y 80 µL de carbonato de sodio al 7.5 %⁷. Tras incubación en oscuridad por 30 minutos, se registró la absorbancia a 760 nm. Los resultados se expresaron como mg equivalentes de ácido gálico por mL de extracto (mg EAG/mL), usando la curva⁷ A₇₆₀ = 0.0041 x + 0.0799 (R² = 0.9988).

Cuantificación de flavonoides totales

Se mezclaron 20 µL de cada extracto (EM) con 6 µL de nitrito de sodio al 5 %, 12 µL de cloruro de aluminio al 10 % y 122 µL de agua destilada⁷. La mezcla se incubó durante 6 minutos a temperatura ambiente; posteriormente, se adicionaron 40 µL de hidróxido de sodio (1 M) y se midió la absorbancia a 510 nm. Los resultados se expresaron como mg equivalentes de catequina por mL de extracto (mg EC/mL), usando la curva⁷ A₅₁₀ = 0.0017x + 0.0414 (R² = 0.9951).

Actividad DPPH

Se preparó una solución de 200 µL de DPPH (0.1 mM) en metanol al 80 %¹³. Se añadieron 40 µL a diferentes concentraciones de cada EM y se incubaron en oscuridad por 30 minutos. La absorbancia se midió a 517 nm. El porcentaje de inhibición se calculó como:

% de inhibición =[(A0-A1)÷A0]×100 EC.1

Donde A0 corresponde a la absorbancia del control y A1 a la absorbancia de la muestra.

El radical ABTS se preparó disolviendo 360 mg de ABTS en 100 mL de agua destilada¹⁴. Su activación se llevó a cabo mediante la adición de 100 mL de persulfato de potasio (2.45 mM), seguido de incubación en oscuridad durante 24 h a temperatura ambiente. Posteriormente, la absorbancia de la solución activada se midió a 732 nm y se ajustó a 0.70 ± 0.02 con agua destilada. Para el ensayo, se añadieron 280 µL de solución ABTS a 20 µL de cada EM en una microplaca tipo ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay), manteniendo la reacción en oscuridad durante 15 minutos. Como control negativo se empleó agua destilada (Acontrol) y como blanco se utilizó PBS en lugar de EM (Ablanco).

La absorbancia de cada EM (Amuestra), control y el blanco, se determinó a 734 nm. El porcentaje de actividad ABTS se calculó mediante la siguiente ecuación 2:

% actividad ABTS = [1-(Amuestra-((Ablanco) x (Acontrol)))] x(100) EC.2

Actividad FRAP

El reactivo FRAP (Ferric Reducing Antioxidant Power) se preparó con 2.5 mL de TPTZ (0.01 M) disuelto en HCl y 2.5 mL de cloruro de hierro III (0.02 M) y 25 mL de tampón acetato 0.3 M (pH 3.6)¹⁴. La mezcla se calentó a 37 °C durante 1 h. Posteriormente, se mezclaron 150 µL de cada EM con 2850 µL del reactivo FRAP y se incubaron en oscuridad durante 30 minutos a temperatura ambiente. A continuación, se colocaron 200 µL de cada muestra en una microplaca y se midió la absorbancia a 593 nm.

La capacidad antioxidante se cuantificó mediante una curva de calibración utilizando Trolox como estándar²³, en un rango de 0–1000 µmol Trolox/mL. Los resultados se expresaron como µmol equivalentes de Trolox.

Evaluación de la actividad antimicrobiana

Cada EM se incorporó en agar Müller-Hinton a 40 °C, en cajas Petri, a concentraciones de 5, 10, 15, 20 y 25 %. Una vez solidificado el medio, se realizaron perforaciones en el centro de la caja de 5 mm de diámetro con un sacabocados estéril¹⁵, en las cuales se inoculó un cultivo de Salmonella Typhi (S. Typhi). Las placas se incubaron a 36 °C durante 72 h.

Como control positivo se utilizó el medio inoculado con la bacteria sin extracto, mientras que como control negativo se empleó cloranfenicol en ausencia de EM.

El porcentaje de crecimiento bacteriano se calculó mediante la siguiente ecuación 3:

% crecimiento = (DCB (mm) ÷ DCN (mm)) ×100 EC.3

Donde DCB corresponde al diámetro de crecimiento bacteriana en el EM y DCN representa el control negativo.

Análisis estadístico

Se utilizó el software IBM SPSS Statistics 25. La comparación entre grupos se realizó mediante la prueba t de Student. Los resultados se expresaron como media ± desviación estándar, considerando significativa una p < 0.05. Todos los ensayos se realizaron por triplicado.

Determinación cualitativa de compuestos fitoquímicos

Los extractos de tallo mostraron la presencia de compuestos bioactivos con potencial terapéutico, destacando fenoles, flavonoides y glucósidos cardiotónicos (Tabla 1).

Tabla 1. Evaluación cualitativa de los fitoquímicos presentes en los extractos de tallo de P. calyculatus. Fuente: elaboración propia

Fitoquímicos	Ensayos	EAT	EMT
Lactonas serquiterpénicas	Baljet	+++	+++
Saponinas (esteroidales y triterpénicas)	Vortex agitation	++	+
Fenoles	Cloruro férrico (5 %)	+	+
Flavonoides	Alcalina	+++	+++
Azúcares reductores	Fehling	-	-
	Benedict	-	-
Glicósidos cardiotónicos	Killer-Kilani	+++	+
Quinonas	H2SO4 concentrado	++	++
Antraquinonas	NH4OH 10 %	+	-
Nota: Contenido: abundante (+++), moderado (++), bajo (+), ausente (-); EMT: extracto metanol-acetona-agua de tallo, EAT: extracto acuoso de tallo.

Análisis cuantitativo y actividad antioxidante del tallo

La Tabla 2 presenta la cuantificación de fenoles y flavonoides totales, así como la capacidad antioxidante de los EM. La Figura 1 presenta la curva estándar utilizada para el ensayo FRAP.

Figura 1. Curva estándar Trolox (elaboración propia)

Tabla 2. Contenido total de fenoles, flavonoides y capacidad antioxidante de extractos de tallo de P. calyculatus.  Fuente: elaboración propia
Extracto	Rendimiento de extracción (%)	Fenoles totales (mgEAG/g)	Flavonoides totales (mgEC/g)	% DPPH	% ABTS	FRAP (mg Trolox/mL)
EAT	15.89 ± 0.54a	153.69 ± 0.16a	20.86 ± 0.01a	85.26 ± 0.25a	97.02 ± 1.4ª	16.6 ± 0.78a
EMT	16.88 ± 0.91a	237.42 ± 0.08b	67.9 ± 0.09b	85.54 ± 0.54a	97.21 ± 1.2ª	6.14 ± 0.56b
Letras distintas significan diferencias significativas (p < 0.03)

EMT mostró un mayor contenido de compuestos fenólicos y flavonoides totales en relación con EAT. La capacidad antioxidante de ambos extractos se determinó empleando los métodos: DPPH, ABTS y FRAP (Tabla 2). EMT y EAT presentaron actividad DPPH y ABTS similar, lo que sugiere que ambos extractos poseen la capacidad para donar electrones, cuya finalidad es neutralizar especies reactivas. En cambio, el ensayo FRAP evidenció una mayor capacidad reductora en EAT en comparación con EMT, lo que sugiere que los compuestos fitoquímicos presentes en el extracto acuoso tienen mayor afinidad por el ion férrico (Fe³⁺) para reducirlo a ion ferroso (Fe²⁺).

Actividad antimicrobiana

EAT y EMT revelaron actividad inhibitoria frente a S. typhi. sin embargo, no se observaron diferencias significativas entre los tratamientos (Figura 2).

Figura 2. Actividad antimicrobiana de EAT y EMT para S. typhi. Fuente: elaboración propia

La actividad inhibitoria frente a S. Typhi resultó ser muy similar entre EAT y EMT. Ambos extractos presentaron zonas de inhibición equitativas, lo que sugiere que los compuestos bioactivos responsables del efecto antimicrobiano se encuentran en concentraciones equivalentes en los extractos.

La composición fitoquímica mostrada en la Tabla 1, sugiere que el tallo de P. calyculatus podría modular dianas moleculares asociadas a procesos oxidativos e inflamatorios⁶. Aunque las pruebas cualitativas son limitadas, permiten caracterizar de forma preliminar el perfil de compuestos bioactivos. Hasta la fecha, no se han reportado investigaciones enfocadas en esta especie; sin embargo, en hojas, flores y frutos se ha detectado la presencia de compuestos fenólicos, flavonoides y antocianinas^6,16,lo que indica un perfil fitoquímico amplio con potencial bioterapéutico. Asimismo, en otra especie de muérdago (Viscum álbum) se ha evidenciado la presencia de fenoles¹³.

En la Tabla 2 se observó que EMT contiene mayor contenido de compuestos fenólicos y flavonoides, esto podría atribuirse a que la extracción orgánica produce una mayor eficiencia y solubilización en la obtención de compuestos bioactivos. Este trabajo representa el primer estudio fitoquímico reportado en el tallo de P. calyculatus. Estudios previos han informado concentraciones de compuestos fenólicos y flavonoides en hojas y flores¹⁷, así como en fruto⁶.

El potencial antioxidante de las plantas depende de la presencia de metabolitos secundarios, especialmente de compuestos fenólicos y flavonoides que neutralizan radicales libres¹⁸. Diversos estudios han documentado una correlación entre el contenido de fenoles totales y la capacidad de eliminación de radicales, lo que se sugiere que contribuyen a la defensa antioxidante¹⁸.

En la Tabla 2 se observó que EAT presentó mayor capacidad reductora FRAP que EMT, a pesar de su menor contenido de fenoles totales. Este comportamiento puede atribuirse a la presencia de compuestos hidrosolubles con alta eficiencia en transferencia electrónica, ya que el ensayo FRAP es sensible a moléculas con grupos hidroxilo disponibles. En contraste, el EMT podría contener compuestos de mayor complejidad estructural que limitan su interacción con el complejo férrico²³.

Los radicales libres están relacionados con procesos de estrés oxidativo, los cuales participan en la progresión de enfermedades crónicas y degenerativas, tales como: cáncer, diabetes y enfermedades cardiovasculares¹⁹.

Hasta la fecha no se han documentado estudios que evalúen la actividad antioxidante del tallo de P. calyculatus. No obstante, en otras especies de muérdago como: Viscum álbum, Loranthus europaeus y Phoradendron brachystachyum, se ha observado que el tallo presenta una notable actividad antioxidante^{20, 21}.

En cuanto a la actividad antimicrobiana, no existen reportes previos que evalúen el efecto del tallo de P. calyculatus frente a S. Typhi. Sin embargo, se ha documentado que el fruto de esta especie presenta actividad inhibitoria contra Escherichia Coli, Salmonella choleraesuis y Shigella flexneri⁶. Asimismo, otras especies del género Psittacanthus, por ejemplo, P. Linearis han demostrado actividad antimicrobiana frente a bacterias patógenas: Staphylococcus aureus, Escherichia coli, y Pseudomonas aeruginosa²², lo que respalda el potencial biológico del género.

Si bien la actividad antimicrobiana de los extractos fue evidenciada mediante el método de difusión en agar por perforaciones, es importante considerar que esta técnica presenta limitaciones inherentes para la cuantificación del efecto inhibitorio. En particular, los halos de inhibición no dependen exclusivamente de la actividad biológica, sino también de la capacidad de difusión de los compuestos en el medio²⁴. En este estudio, la ausencia de la determinación de la Concentración Mínima Inhibitoria (CMI) limita la posibilidad de establecer comparaciones directas con antibióticos de referencia bajo condiciones estandarizadas, ya que CMI es considerada el parámetro más adecuado. No obstante, el enfoque empleado en este estudio permitió una evaluación preliminar del potencial antimicrobiano de los extractos, aportando información relevante sobre su efecto inhibitorio frente a Salmonella Typhi. Por lo tanto, se sugiere que en futuros estudios se incorporen metodologías complementarias, como ensayos de microdilución en caldo, para determinar la CMI y profundizar en la caracterización farmacológica de estos extractos.

Basado en estos resultados, el presente estudio evidencia que P. calyculatus constituye un recurso vegetal con potencial de aprovechamiento sustentable, ya que el tallo posee actividad antioxidante y antimicrobiana, esto conferido por la gran variedad de compuestos fitoquímicos que posee, los cuales podrían ejercer efectos bacteriostáticos o bactericidas frente a microorganismos patógenos. Por lo tanto, esta planta podría ser usada como una fuente promisoria de compuestos bioactivos con posibles aplicaciones al tratamiento de enfermedades causadas por estrés oxidativo y a infección bacteriana. No obstante, es indispensable realizar estudios más profundos y completos acerca de la identificación individual de compuestos bioactivos.

Se agradece al Tecnológico Nacional de México por la financiación al proyecto TECNM (clave 21168.24-PD), así como al Tecnológico Nacional de México/ ITS de Purísima del Rincón, por su valioso apoyo durante la realización de este trabajo.

1. ORNELAS, Juan Francisco y Vásquez-Aguilar, Antonio Acini. Efectos mediados por hospedero en la variación del tamaño de frutos del muérdago hemiparásito Psittacanthus schiedeanus (Loranthaceae). Acta Botanica Mexicana. [En línea]. No. 130. 2023. [Fecha de consulta: 23 de junio de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.21829/abm130.2023.2134 ISSN 2448-7589.
2. AZPEITIA, Fabiola y Lara, Carlos. Reproductive biology and pollination of the parasitic plant Psittacanthus calyculatus (loranthaceae) in central México. Journal of the Torrey Botanical Society. [En línea]. Vol. 133, no. 3, J p. 429–438. July 2006. [Fecha de consulta: 23 de junio de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.3159/1095-5674(2006)133[429:RBAPOT]2.0.CO;2 ISSN: 1940-0616.
3. HERNÁNDEZ RODRÍGUEZ, Patricia; Pabón Baquero, Ludy Cristina y Rodríguez Álvarez, Martha Fabiola. Propiedades químicas y biológicas de Arbutus unedo: una planta con potencial medicinal. Revista Cubana de Farmacia. [En línea]. Vol. 49, no. 1, p. 144–155, 2015. [Fecha de consulta: 23 de mayo de 2025]. Disponible en https://www.medigraphic.com/pdfs/revcubfar/rcf-2015/rcf151n.pdf ISSN 1561-2988.
4. ALONSO-CASTRO, Angel Josabad; Villarreal, Maria Luisa; Salazar-Olivo, Luis A.; Gomez-Sanchez, Maricela; Dominguez, Fabiola; Garcia-Carranca, Alejandro. Mexican medicinal plants used for cancer treatment: Pharmacological, phytochemical and ethnobotanical studies. Journal of Ethnopharmacology. [En línea]. Vol. 133, no. 3, p. 945–972. 16 February 2011. [Fecha de consulta: 13 de junio de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.11.055 ISSN 1872-7573.
5. CEMALUK, Egbuono A. C. & Nwankwo, N. Emeka. Phytochemical properties of some solvent fractions of petroleum ether extract of the African mistletoe (Loranthus micranthus Linn) leaves and their antimicrobial activity. African Journal of Biotechnology. [En línea]. Vol. 11, no. 62, Jan 21, 2016. [Fecha de consulta: 10 de junio de 2025]. Disponible en https://www.ajol.info/index.php/ajb/article/view/129057 ISSN: 1684-5315.
6. OCHOA-CRUZ, Zaida; Molina-Torres, Jorge; Angoa-Pérez, María V.; Cárdenas-Valdovinos, Jeanette G.; García-Ruiz, Ignacio; Ceja-Díaz, José A.; Bernal-Gallardo, José O. y Mena-Violante, Hortencia G. Phytochemical analysis and biological activities of ripe fruits of mistletoe (Psittacanthus calyculatus). Plants. [En línea]. Vol. 12, no. 12, p. 1689–1699. 12 June 2023. [Fecha de consulta: 6 de enero de 2025]. Disponible en https://www.mdpi.com/2223-7747/12/12/2292 ISSN: 2223-7747.
7. FLORES SIERRA, José de Jesús; Sánchez Guevara, Daniela; Xoca Orozco, Luis Ángel; Hernández Mendoza, Gustavo; Reyes Bautista, Raúl. Análisis fitoquímico de compuestos de interés terapéutico del muérdago Psittacanthus calyculatus ubicado en el cerro del Palenque de Purísima del Rincón, Guanajuato. Revista Bio Ciencias. [En línea]. Vol. 11, e1572. April 2024. [Fecha de consulta: 28 de octubre de 2025]. Disponible en https://www.researchgate.net/publication/380221792_Analisis_fitoquimico_de_compuestos_de_interes_terapeutico_del_muerdago_Psittacanthus_Calyculatus_ubicado_en_el_cerro_del_Palenque_de_Purisima_del_Rincon_Guanajuato ISSN: 2007-3380.
8. SAURA-CALIXTO, Fulgencio; Serrano, José & Goñi, Isabel. Intake and bioaccessibility of total polyphenols in a whole diet. Food Chemistry. [En línea]. Vol. 101, no. 2, p. 492–501. 2007. [Fecha de consulta: 28 de octubre de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2006.02.006 ISSN 0308-8146
9. MASANGWA, J. I. G.; Aveling, T. A. S. & Kritzinger, Q. Screening of plant extracts for antifungal activities against Colletotrichum species of common bean (Phaseolus vulgaris L.) and cowpea (Vigna unguiculata (L.) Walp). Journal of Agricultural Science. [En línea]. Vol. 151, no. 4, p. 482–491. August 2013. [Fecha de consulta: 22 de abril de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.1017/S0021859612000524 ISSN: 0021-8596.
10. GARCÍA-GRANADOS, R. U.; Cruz-Sosa, F.; Alarcón-Aguilar, F. J.; Nieto-Trujillo, A. y Gallegos-Martínez, M. E. Análisis fitoquímico cualitativo de Thalassia testudinum Banks ex Köning et Sims de la localidad de Champotón, Campeche, México, durante el ciclo anual 2016-2017. Polibotánica. [En línea]. No. 48 (24), p. 151–168. 12 de diciembre de 2019. [Fecha de consulta: 22 de abril de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.18387/polibotanica.48.12 ISSN 1405-2768.
11. BULUGAHAPITIYA, Vajira P. Plants based natural products: extraction, isolation and phytochemical screening methods. [En línea]. June 2013. [Fecha de consulta: 12 de abril de 2025]. Disponible en https://www.researchgate.net/publication/324136585 ISBN: 978-955-54456-1-0.
12. KHATTAK, Umbreen; Rehmanullah; Khan, Shafqat Ali; Barkatullah; Ullah, Sami & Saima. Pharmacognostic evaluation and analgesic efficacy of Euphorbia dracunculoides. Pharmacognosy Journal. [En línea]. Vol. 9, no. 5, p. 644–653. Sep-oct, 2017. [Fecha de consulta: 12 de abril de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.5530/pj.2017.5.102 ISSN: 0975-3575.
13. KLESZKEN, Eva; Purcarea, Cornelia; Pallag, Annamaria; Ranga, Floricuta; Memete, Adriana Ramona; Miere, Florina; Vicas, Simona Ioana. Phytochemical profile and antioxidant capacity of Viscum album L. Subsp. album and Effects on Its Host Trees. Plants. [En línea]. Vol. 11, no. 22, p. 3021. 9 November 2022. [Fecha de consulta: 22 de octubre de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.3390/plants11223021 ISSN: 2223-7747.
14. HOSU, Anamaria; Cimpoiu, Claudia; David, Luminita & Moldovan, Bianca. Study of the antioxidant property variation of cornelian cherry fruits. Journal of Analytical Methods in Chemistry. [En línea]. 2016, p. 1–5. [Fecha de consulta: 6 de octubre de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.1155/2016/2345375 ISSN: 2090-8865.
15. SÁNCHEZ-GARCÍA, Eduardo; Castillo-Hernández, Sandra Loruhama y García-Palencia, Patricia. Actividad antimicrobiana. En: Investigación en plantas de importancia médica. [En línea]. Omnia Science. 2016, p. 77–100. [Fecha de consulta: 16 de octubre de 2025]. Disponible en: https://doi.org/10.3926/oms.334 ISBN: 978-84-944673-7-0.
16. SERRANO-MALDONADO, M. J.; Guerrero-Legarreta, I.; Pérez-Olvera, C. de la Paz y Soriano-Santos, J. Actividad antioxidante y efecto citotóxico de Cladocolea loniceroides (van Tieghem) Kuijt (Loranthaceae). Revista Mexicana de Ingeniería Química. [En línea]. Vol. 10, no. 2, p. 161–170. Agosto 2011. [Fecha de consulta: 16 de octubre de 2025]. Disponible en http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1665-27382011000200002&lng=es&nrm=iso&tlng=es ISSN: 1665-2738.
17. IBARRA-ALVARADO, C.; Rojas, A.; Mendoza, S.; Bah, M.; Gutiérrez, D. M.; Hernández-Sandoval, L.; Martínez, M. Vasoactive and antioxidant activities of plants used in Mexican traditional medicine for the treatment of cardiovascular diseases. Pharmaceutical Biology. [En línea]. Vol. 48, no. 7, p. 732–739. 03 June 2010. [Fecha de consulta: 16 de agosto de 2025]. Disponible en: https://doi.org/10.3109/13880200903271280 ISSN: 1388-0209.
18. OLSZOWY, Małgorzata. What is responsible for antioxidant properties of polyphenolic compounds from plants? Plant Physiology and Biochemistry. [En línea]. Vol. 144, p. 135–143. November 2019. [Fecha de consulta: 16 de agosto de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2019.09.039 ISSN: 0981-9428.
19. LOBO, V.; Patil, A.; Phatak, A. & Chandra, N. Free radicals, antioxidants and functional foods: Impact on human health. Pharmacognosy Reviews. [En línea]. Vol. 4, no. 8, p. 118–126. 2010. [Fecha de consulta: 26 de agosto de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.4103/0973-7847.70902 ISSN: 0976-2787.
20. MAJEED, Mahak; Pirzadah, Tanveer Bilal; Mir, Manzoor Ahmad; Hakeem, Khalid Rehman; Alharby, Hesham F.; Alsamadany, Hameed; Bamagoos, Atif A. and Rehman, Reiaz Ul. Comparative study on phytochemical profile and antioxidant activity of Viscum album L. (White Berry Mistletoe), Derived from Different Host Trees. Plants. [En línea]. Vol. 10, no. 6, p. 1191. 11 June 2021. [Fecha de consulta: 26 de agosto de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.3390/plants10061191 ISSN: 2223-7747.
21. GUTIÉRREZ-GRIJALVA, Erick Paul; Zamudio-Sosa, Victor Eduardo; Contreras-Angulo, Laura Aracely; Leyva-López, Nayely and Heredia, J. Basilio. Bioaccessibility of phenolic compounds from mistletoe infusions and Effect of In Vitro Digestion on Its Antioxidant and Pancreatic Lipase Inhibitory Activity. Foods. [En línea]. Vol. 11, no. 21, p. 3319. 23 October 2022. [Fecha de consulta: 15 de octubre de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.3390/foods11213319 ISSN: 2304-8158.
22. WAGNER, Marcelo Luis; Rojas Idrogo, Consuelo; Delgado Paredes, Guillermo Eduardo y Balladares Ballona, Juan Pablo. In vitro tissue culture and phytochemical analysis of Psittacanthus linearis (Killip) J.K. Macbride (Loranthaceae). Revista Colombiana de Biotecnología. [En línea]. Vol. 21, no. 2, p. 22–35. 2019. [Fecha de consulta: 21 de octubre de 2025]. Disponible en https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v21n2.83410 ISSN: 1909-8758.
23. JIMÉNEZ MORALES, Willmann Antonio and Cañizares-Macías, María del Pilar. A breakthrough SIA-based dual assay for simultaneous evaluation of antioxidant capacity via ABTS and FRAP mechanisms. Analytical Chemistry. [En línea]. Vol. 98, no. 6, p. 4548–4561. February 04, 2026. [Fecha de consulta: 21 de marzo de 2026]. Disponible en https://doi.org/10.1021/acs.analchem.5c05489 ISSN: 1520-6882.
24. CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing (M100). 30th Edition. [En línea]. Enero 29, 2020. [Fecha de consulta: 23 de marzo de 2026]. Disponible en: https://www.nih.org.pk/wp-content/uploads/2021/02/CLSI-2020.pdf